幼龄动物麻醉要点注意,你操作对了吗?

在兽医麻醉领域相较于成年动物,新生动物(通常4周龄)和幼龄动物(通常6月龄)的“麻醉挑战”主要来源于生理系统发育尚不成熟、麻醉镇痛药物代谢方式存在差异,体型过小带来的静脉导管以及气管插管放置困难。其面临的临床挑战使兽医技术人员必须了解它们独特的解剖结构、生理和药理学差异,从而帮助它们制定更合适的麻醉方案。

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龄动物生理学/解剖学特点

(1)新生和幼龄动物依靠心率来维持心输出量和血压[1]。他们的功能收缩组织较少,心脏储备有限,心室顺应性低,因此增加每搏输出量的能力降低[2]。同时它们的交感神经系统不发达使它们更难耐受失血和更难维持血压。因此,心动过缓可能会对心输出量和随后的血压产生显著的影响[3]

(2)幼龄动物的肺存储量有限,它们更容易发生上呼吸道阻塞。此外,它们胸腔更柔韧、肋间肌肉较弱、肺顺应性较差,呼吸总功比成年动物更大,从而导致更易出现呼吸道塌陷呼吸疲劳[4]。这些方面都会使幼龄动物在麻醉期面临迅速的血氧浓度降低以及低血氧的风险。幼犬和幼猫对低血氧和呼吸疲劳的敏感性导致了在整个麻醉期内都需要进行氧气补充,并仔细监测呼吸系统。

(3)幼龄动物肝肾系统不成熟,而镇静和麻醉的主要考虑之一就是药物的代谢、生物转化和排泄。这就可能会观察到在新生动物上药物出现更明显的效果以及更长的作用时间,所以操作人员可能需要相应调整和减少药物剂量及给药间隔。它们还很容易发生低血糖[5],在麻醉过程中,监测血糖和给予葡萄糖是有必要的。如上述,与成年犬猫相比幼龄动物的肾功能也会降低,使得对体液超负荷和对低血压的耐受度不好。

(4)幼龄动物的体温调节功能不完善,它们极易受到低温的影响。大多数麻醉剂会影响体温调节中枢,并进一步导致体温过低。这可能会产生许多有害影响,包括代谢率降低、感染性增加、心肌抑制、呼吸抑制以及药物代谢迟缓。

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幼龄动物麻前准备

(1)麻前准备

全面的体格检查是任何动物接受镇静或麻醉的基石。

对于未断奶的幼犬幼猫,麻前不应禁食。6周龄以上的麻醉犬猫一般情况禁食最多3-4小时[5]。长时间禁食可能会导致低血糖和脱水,致使低体温的发生。因此,对于这些动物没必要严格禁水

(2)设备准备

在幼龄动物的诱导麻醉中,须有正确的设备,如适当的气管插管(Endotracheal Tubes)、具有良好光源且大小合适的喉镜。在非常小的患者中可准备没有气囊的(uncuffed)气管插管以最大限度地扩大呼吸道直径和减少呼吸阻力,如图1所示。

图1 不同的气管插管

图片来源:https://encryptedtbn0.gstatic.com/imagesq=tbn:ANd9GcQgj0DVtJOtriyT5tOE2RVIkY5nehdSmOToxRVQOx1QSg&s

因为幼龄动物的器官组织非常脆弱,如果使用了带气囊的气管插管,必须注意不要过度膨胀气囊[6]

 

由于幼龄动物的体型和潮气量较小,很容易导致机械死腔的增加。原因包括气管插管过长和不合理的呼末二氧化碳检测仪链接。图2显示的是动物呼吸死腔增加的呼末二氧化碳监测图。因此,应该提供氧气和适合幼龄动物大小的气囊的呼吸回路,以帮助它们的呼吸。非复吸式回路可以减少呼吸阻力,使麻醉剂浓度更快变化,对于这些幼龄患者是更好的选择。由于这些患畜的低血氧风险很高,在麻醉诱导前使用适当大小的面罩进行预吸氧是非常重要且必要的。

图2 死腔增加的呼末CO2图(基线不为0)

另外,对于这些幼龄动物患者来说,特别是对非常小体的幼龄动物,准确的体重是至关重要的,因为过量的液体或药物可能会产生灾难性的影响。

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幼龄动物麻前给药

除了非常虚弱或生病的患者外,预先给药对新生/幼龄动物是有益的。使用平衡麻醉药物组合可以缓解压力,并显著减少随后所需的诱导麻醉剂和维持麻醉剂的量。因为血脑屏障更具渗透性,为了安全起见,这里推荐使用短效可逆的药物。

药物的选择和剂量取决于动物的年龄和生理状态。

用作幼龄动物麻前用药的4类主要药物是阿片类药物、苯二氮卓类药物、抗胆碱类药物和镇静剂(表1)。这些药物可以单独使用,也可以联合使用。

表1 不同药物剂量及药物特点

注:

* 以上表格中的剂量为成年动物中推测而来,更推荐联合用药提供平衡麻醉。药物剂量在幼龄动物尤其是新生动物中推荐从最小剂量开始使用,期间需谨慎监测。

* 药物剂量(尤其是诱导麻醉剂的剂量需缓慢给药至起效)

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幼龄动物麻醉诱导与维持

在麻醉诱导前,建议使用氧气面罩,用100%氧气预吸氧至少3分钟。

(1)诱导麻醉剂

注射诱导麻醉药物的好处在于提供更迅速的效果,这有助于麻醉师快速控制呼吸道。

通常用作诱导剂的注射用药物有丙泊酚、氯胺酮/地西泮、依托咪酯和阿法沙龙,如表1所示。诱导麻醉剂的剂量非常重要,对于幼龄动物可以用相容的稀释剂进行稀释以保证药物注射的准确操作。

这些可注射药物很有可能产生呼吸抑制,因此兽医需要能够快速控制呼吸道,供应氧气,并在必要时进行通气。

(2)呼吸麻醉剂

临床使用的吸入麻醉剂基本都会产生一定程度的与剂量相关的心血管和呼吸抑制。异氟烷和七氟烷有时用于无法进行静脉麻醉动物的诱导麻醉。七氟烷在血液中的溶解度比异氟醚低,因此七氟烷吸收(诱导)和消除(恢复)更快。吸入麻醉剂作为诱导时应配合使用面积小的、合适的、无效腔最小的面罩,如图3所示。用温热的毛巾将动物温柔包裹可减少动物受约束的压力。新生动物吸入麻醉剂起效较快,治疗指数较窄,需注意不能过量给药。

图3 吸入麻醉诱导时建议使用面罩类型

图片来源:

https://todaysveterinarynurse.com/wpcontent/uploads/sites/3/2017/09/FarryGoodwin_PediatricAnesthesia_TVTechSepOct2017.pdf

(3)局部麻醉

局部麻醉技术可用于提供镇痛和麻醉,减少维持麻醉剂的用量。由于兽医新生和幼龄动物患者体型较小,存在给患者过量用药并导致中毒的可能性。因此,局麻药的正确剂量应该仔细计算、检查和记录。对于布比卡因这样有显著心脏毒性的药物应谨慎使用。

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幼龄动物麻醉后支持

(1)供氧、加温操作

与任何动物一样,麻醉后必须充分评估呼吸和循环系统功能,并在必要时提供支持。

低温动物在苏醒期会颤抖,这可能将增加氧气的消耗量至300%[9],此时需要给苏醒期动物补充氧气以支持氧饱和度。并且对于体温过低的动物需要主动加温操作

(2)疼痛管理

如果可以,应通过全身给药或局部给药以提供适当的镇痛。由于生存的本能,幼龄动物或新生动物不会表现出明显的疼痛迹象,因此识别出它们的疼痛会更有挑战性。不要因为它们没有表现出明显疼痛,就认为它们没有疼痛感受。阿片类药物(如保适宁)是不错的选择。对于强阿片类药物在给药时需注意监测副反应,如吗啡给药带来的呼吸抑制。与之前提到的一样,新生或幼龄动物在给药时,必须精确计算其所需剂量,并且缓慢给药至起效。非甾体类抗炎药需要肝脏的代谢,因此可能不是新生或幼龄动物最佳的镇痛药选择,若使用则需避免剂量过高或用药时间过久。

(3)术后进食

麻醉后应尽可能恢复正常喂养,未断奶的幼犬/猫一旦恢复吮吸,应尽快回到它们的母亲身边。

 

结语

通过充分的准备和对幼龄动物的生理和解剖差异的熟知,希望每个麻醉师都可以为幼龄动物提供安全、合适的用药方案。

参考文献

[1] Holden D. Paediatric patients. In: BSAVA Manual of Canine and Feline Anaesthesia and Analgesia. Gloucester, England: British Small Animal Veterinary Association; 2007:296-302.

[2] Grubb T, Perez Jimenez T, Pettifer G. Neonatal and geriatric patients. In: Grimm KA, Lamont LA, Tranquilli WJ, et al, eds. Veterinary Anesthesia and Analgesia. 5th ed. Ames, IA: John Wiley & Sons; 2015:983-987.

[3] Fox MW. Developmental physiology and behaviour. In: Canine Pediatrics. Springfield, IL: CC Thomas; 1966.

[4] Fávaro da Cunha A. Neonatal, pediatric, and geriatric concerns. In: Snyder LBC, Johnson RA, eds. Canine and Feline Anesthesia and Co-existing Disease. Ames, IA: John Wiley & Sons; 2015:310-319.

[5] Agarwal R. Neonatal anesthesia. In: Duke J, ed. Duke’s Anaesthesia Secrets. Philadelphia: Mosby Elsevier; 2006:364-380.

[6] Sideri AI, Galatos AD, Kazakos GM, Gouletsou PG. Gastro-oesophageal reflux during anaesthesia in the kitten: comparison between use of a laryngeal mask airway or an endotracheal tube. Vet Anaesth Analg 2009;36(6):547-554.

[7] Wright M. Pharmacologic effects of ketamine and its use in veterinary medicine. JAVMA 1982;180(12):1462-1471.

[8] Clarke K, Trim C, Hall LW. Patient monitoring and clinical measurement. In: Veterinary Anaesthesia. 11th ed. London: Elsevier; 2014:19-63.

[9] Muravchick S. Preoperative assessment of the elderly patient. Anesthesiol Clin North Am 2000;18(1):71-89, vi.

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